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2024年3月13日发(作者:企业网站建设的一般要素不包括)

银染的方法种类很多,目前有文献报道的就有 100 多种。大致的原理是银离子在碱

性pH 环境下被还原成金属银,沉淀在蛋白质的表面上而显色。由于银染的灵敏度很高,

可染出胶上低于1 ng/蛋白质点,故广泛的用在2D 凝胶分析上,及极低蛋白含量测定的

垂直凝胶中。这里介绍的是我们实验室成功运用的银染方法,主要是用于垂直凝胶电泳中

低丰度蛋 白的检测!如内源性GST-Pulldown、Co-IP等实验中相互作用蛋白的研究

银染操作规程

实验原理:在碱性条件下,用甲醛将蛋白带上的硝酸银(银离子)还原成金属银,以

使银颗粒沉积在蛋白带上。染色的程度与蛋白中的一些特殊的基团有关,不含或者很少含

半胱氨酸残基的蛋白质有时候呈负染。

试剂:乙醇、冰醋酸、乙酸钠、硫代硫酸钠、硝酸银、碳酸钠、甘氨酸或2.2H2O、

甲醛

实验操作程序:

固定:30min或者更长时间

100ml 乙醇(40% 乙醇)25ml冰醋酸(10% 冰醋酸)加水到250ml

致敏:30min

75ml 乙醇(30% 乙醇)17g乙酸钠或28.2g三水乙酸钠0.5g硫代硫酸钠加水到终

体积250ml

水洗:3 x 10min

银染:20min

0.625g AgNO3、100 ul 37%甲醛(在使用前加入)加水到终体积250ml

水洗: 2 x 1 min (注意把握时间,水洗时间长显色速度慢,点的颜色偏黄色)

显色:视情况而定

6.25 g Na2CO3、50 ul 37% 甲醛(在使用前加入)加水到终体积250ml

终止:10min

3.65g 2.2H2O 或者1g 甘氨酸 加水到终体积250ml

保存:1% 冰醋酸,4 ℃

注意事项:

1.固定时间较长,则加一步水洗30min,以免胶太脆而破碎。

2.甲醛在使用前加入。

3.最好多配制一份显色液,第一次显色到溶液变混浊时换一份显色液,显色到点清晰。

4.显色过程很快,要注意把握时间,避免染色过度。

5.银染液和显色液需要预冷。

6.所用器皿要很洁净,不用手直接接触,以免杂蛋白污染!

7.清洗用水尽量用高纯度去离子水,蒸馏水更佳,可以减少背景着色。

银染注意事项:

1. 银染主要出现在胶的表面,用薄胶(0.5-0.75mm)可以提高灵敏度。

2. 对于考马斯亮蓝染色的胶,可用甲醇将胶漂洗后,继续进行银染。乙酸会干扰银染,

因此要确保将凝胶中的乙酸彻底洗净。如果凝胶被过度银染,可用Rapid Fix脱色,并用

考马斯亮蓝二次染色。

3. 不同蛋白质对银染的反应是不一样的,尤其是碱性蛋白染色效果差。因此,不宜用

银染测定不同蛋白的比例。

4. 染色过程中,缓慢的振荡是必要的,一般选择40-60 rpm.

5. 凝胶表面的裂纹多是由于压力、手印及表面干燥所致,所以全程操作中都应带手套。

6. 凝胶背景呈均一的黑色多是水中的杂质引起的,所以溶液的配制应使用电导率小于

1 μS的去离子水。

7. 如果染色后有呈灰尘或烟雾状灰色或棕色的沉淀出现在凝胶表面,可能是在几步漂

洗过程中洗得不够彻底,或是染色过程时温度太低。

8. 较深的银染背景多是丙烯酰胺中的杂质所致。

9. 在最初甲醇洗脱时就应该先除去甘油、尿素、甘氨酸、Triton X-100和两性电解质

这些干扰性物质。

10. 室温操作,温度的波动往往会干扰银染的效果,恒温水浴可以解决这个问题。

11. 当蛋白质中含有核酸或金属时,银染则不会奏效。改变固定剂和染色之前对胶进

行漂洗可以改进染色效果。

12. SDS凝胶中的巯基乙醇会导致在60 KDa或67 KDa处出现两条水平线。减少巯

基乙醇的用量即可避免。

13. 凭借戊二醛预处理可以使各种蛋白质的染色提高40倍。

14. 染色使用的玻璃器皿必须非常干净,用酸浸泡可以满足要求。

15. 银染应尽快照相,随着时间延长,蛋白条带会变浅,而背景会加深。

六 我发个简单的配方,我一直用还挺好用,

固定 甲醇 250ml、冰醋酸 25ml、加双蒸水至500ml ,30min,水洗2x2min,后水洗

1h。

敏化 硫代硫酸钠0.1g加双蒸水至500ml,冲洗 双蒸水 2x30s

银反应 硝酸银0.5g加双蒸水至500ml,避光孵育30min,冲洗双蒸水 2次x5min

显色 碳酸钠10g加双蒸水至500ml,甲醛500ul,现用现加。

终止 观察至想要效果,1%的冰醋酸终止,

七 银染应该注意的事项:

1. 银染主要出现在胶的表面,用薄胶(0.5-0.75mm)可以提高灵敏度。

2. 对于考马斯亮蓝染色的胶,可用甲醇将胶漂洗后,继续进行银染。乙酸会干扰银染,

因此要确保将凝胶中的乙酸彻底洗净。如果凝胶被过度银染,可用Rapid Fix脱色,并用

考马斯亮蓝二次染色。

3. 不同蛋白质对银染反应不一样,尤其是碱性蛋白染色效果差。因此,不宜用银染测

定不同蛋白的比例。

4. 染色过程中,缓慢的振荡是必要的,一般选择40-60 rpm.

5. 凝胶表面的裂纹多是由于压力、手印及表面干燥所致,所以全程操作中都应带手套。

6. 凝胶背景呈均一的黑色多是水中的杂质引起的,所以溶液的配制应使用电导率小于

1 μS的去离子水。

7. 如果染色后有呈灰尘或烟雾状灰色或棕色的沉淀出现在凝胶表面,可能是在几步漂

洗过程中洗得不够彻底,或是染色过程时温度太低。

8. 较深的银染背景多是丙烯酰胺中的杂质所致。

不要用双蒸水

用去离子的, 双蒸水 的某些离子会和agno3反应

若用去离子水,也要经常给机器换滤头,以免去离子不净

一 步骤 溶液

时间

固定 甲醇 100ml 冰醋酸 25ml 加双蒸水至250ml

30min

3次

洗 双蒸水

敏化 甲醇75m 戊二醛(25%w/v)1.25ml 硫代硫酸钠(5%w/v) 10ml 醋

酸钠(17g) 30min

加双蒸水至250ml

冲洗 双蒸水

3次

银反应 硝酸银溶液(2.5%w/v) 25ml 甲醛(37%w/v) 0.1ml 加双蒸水至

250ml 20min

2次

洗 双蒸水

显色 碳酸钠(6.25g) 甲醛(37%w/v) 0.05ml 加双蒸水至250ml

2-5min

终止 EDTA-Na22H2O(3.65g) 加双蒸水至

10min

250ml

3次

洗 双蒸水

二 1)PAGE胶切下后用50%乙醇(100ml左右)洗三次,每次20分钟

2)2%硫代乙醇酸钠稀释50倍作用1分钟,双蒸水洗3次,每次20秒

3)2%硝酸银稀释10倍作用20分钟,双蒸水洗3次,每次20秒

4)6%碳酸钠溶液显色,直到条带清晰为止,一般几分钟,大量水冲洗

5)加中止液10%乙酸中止即可

三 1. 固定:100ml MeOH, 24ml H Ac, 56ml 0.04%HCHO, 20ml ddH2O,洗三次,

每次>=20分钟;

2. 50%EtOH洗PAGE胶三次,每次20分钟;

3. 预处理:0.02% Na2S2O3 处理一分钟;

4. 水洗:ddH2O漂洗三次,每次20秒;

5. 染色:0.8ml 20%AgNO3+72ml 0.04%HCHO处理PAGE胶20分钟;

6. 水洗:同上;

7. 显色:25ml 12%Na2CO3, 24ml 0.04%HCHO, 1ml 0.02% Na2S2O3, 漂洗10

-15分钟;

8. 水洗:同上;

9. 终止:50%MeOH, 12%H Ac,10分钟。

四 1 银染液1(1000ml) : 甲醇50% 乙酸12% (甲醇 500ml 冰醋酸 120ml)

2 银染液2(1000ml): 甲醇30%,乙酸钠0.4M,戊二醛0.5%,硫代硫酸钠0.1%,

(含乙酸 1-2ml)

甲醇300ml 乙酸钠54.4g 戊二醛10ml 硫代硫酸钠1g 乙酸1-2ml

3 显色液(1000ml) 无水碳酸钠2.5% 甲醛 0.02% (无水碳酸钠25g, 甲醛1.5ml)

4 硝酸银(100ml): 20%硝酸银 (过滤后待用)

染色步骤:

1 银染液1 洗2次, 每次5分钟

2 银染液2 洗1次,每次30分钟

3 超纯水 洗2次, 每次1分钟

4 0.5%硝酸银 洗30分钟

5 超纯水洗5次,每次1分钟 (关键步骤,共计5分钟)显色液显色

6 看到各条带,则倾去显色液, 1% 乙酸中止

我感觉浸银后、显色前的水洗非常关键,时间不能太长,次数不能太多,否则可能会

染不上颜色。但水洗不充分又可能导致背景较深。我个人一般是用水洗三遍,每次半分钟

左右。

固定液:50%乙醇,10%冰醋酸,40%水

浸泡液:30%乙醇,6.8% NaAc,50%戊二醛 0.625ml,0.2% NaS2O3•5H2O

银染液:0.1% AgNO3,0.02% 甲醛

显色液:2.5% Na2CO3,0.01% 甲醛

终止液:1.46% EDTA-2Na•2H2O


本文标签: 银染 染色 蛋白 凝胶